糖原染色液
＂糖原染色液試劑配製 （1）0.5%高碘酸水溶液：參見真菌染色（一）高碘酸-無色品紅（PAS）法”。 （2）0.5%偏重亞硫酸鈉水溶液：參見真菌染色“（一）高碘酸-無色品紅（PAS）法”。 （3）無色品紅液（Schiff試劑）：參見真菌染色“（一）高碘酸-無色品紅（PAS）法”。 （4）Mayer蘇木精液：參見病理組織學診斷檢材的製備技術“六、”項“（四）HE染色試劑的配製”。 （5）1%甲基綠水溶液： 甲基綠1g 蒸餾水100ml 用三氯甲烷抽提，除去甲紫成分後使用。抽提方法參見核酸染色“（二）甲基綠派洛寧法”。 （6）1%澱粉酶： 澱粉酶1g 蒸餾水100ml （7）唾液：用燒杯收集唾液（必要時可在舌尖上滴加1滴1%冰醋酸，促使唾液分泌），用玻棒攪拌均勻，加入5~10倍蒸餾水稀釋，再用玻棒攪拌數分鐘，用雙層紗布過濾後使用。＂
＂糖原染色液。染色程式 （1）取新鮮薄片組織，立即用Gendre液固定6~12h或Carnoy液固定3~6h，其間可更換兩次相應的固定液，然後轉入95%乙醇。 （2）無水乙醇按常規脫水透明，石蠟包埋，切片厚4~5μm。 （3）取兩張連續切片，分別作A和B記號，然後把B片脫蠟至水。 （4）把B號切片置入預熱至37℃的1%澱粉酶液，于37℃溫箱內消化1h， 或用預熱至37℃的唾液在37℃溫箱消化30min。 （5）取出切片稍水洗。 （6）在消化過程中，把A片脫蠟至水。 （7）在A 、B兩片同時滴入0.5%高碘酸水溶液氧化5~8min。 （8）流水沖洗2min，再用蒸餾水洗1次。 （9）於暗處，無色品紅液加蓋染色10~20min。 （10）用0.5%偏重亞硫酸鈉液滴洗2次，每次約1min。 （11）流水沖洗2min。 （12）1%甲基綠水溶液複染胞核3~5min，或用Mayer蘇木精液淺染細胞核（必要時用鹽酸乙醇分化，再用流水沖洗）。 （13）稍水洗。 （14）常規脫水、透明，中性樹膠封固。＂